Лабораторные водяные бани Stegler и Tagler. Отличительные особенности и технические характеристики моделей
В лабораториях, университетах и колледжах, в научных организациях, в медицинских учреждениях довольно часто проводят термостатирование и подготовку проб во время различных исследований. Самый распространенный и используемый для этих целей прибор – лабораторная баня.
На сегодняшний день на рынке лабораторного оборудования представлено множество моделей бань от разных производителей. Бани выпускаются различных модификаций — водяные, песчаные, масляные.
Ниже представлены основные технические характеристики и особенности лабораторных водяных бань марок Stegler (производство Китай) и Tagler (производство Россия).
Водяные бани Stegler (Стеглер)
Модельный ряд водяных бань Stegler (Стеглер) включает в себя семь модификаций с разным объемом емкости, количеством устанавливаемых колб, глубиной погружения и мощности.
Все лабораторные бани Stegler можно условно разделить на серию WB (3 модели), серию ТБ (2 модели), серологическую баню SHHW21.600AII и баню-шейкер SB-22.
Все эти бани имеют высококачественный стальной корпус с порошковым покрытием. Благодаря электростатической покраске поверхность остается прочной и долговечной. Внутренняя часть бань, а именно емкость ванны, крышка и поддоны выполнены из нержавеющей стали и имеют высокую коррозионную устойчивость.
Приборы оснащены цифровым дисплеем (ЖК или светодиодным), имеют таймер для установки времени работы, удобное управление с помощью клавиш, микропроцессорный контроллер с функцией синхронизации и защиту от перегрева.
Благодаря своей компактности и легкому весу, данные бани очень удобны для размещения в любом месте вашей лаборатории, а также достаточно просты в использовании и эксплуатации.
Водяные бани Stegler WB
Нагревательный элемент защищен от перегрева. В бане предусмотрена индикация состояния нагревателя и аварийной защиты.
Особенности:
Технические характеристики:
| Модель Stegler | WB-2 | WB-4 | WB-6 |
| Кол-во мест | 2 | 4 | 6 |
| Количество рядов для расположения колб | 1 ряд | 2 ряда | 2 ряда |
| Полезный объем емкости, л | 6,75 | 14,62 | 22,5 |
| Внешние размеры, ДхШхВ, мм | 318х168х210 | 350x318x210 | 524x322x210 |
| Внутренние размеры, ДхШхВ, мм | 300х150х150 | 325х300х150 | 500x300x150 |
| Полезная глубина, мм | 100 | 100 | 100 |
| Мощность, Вт | 500 | 1000 | 1500 |
| Вес | 4,5 | 6 | 7,5 |
| Вес в транспортной упаковке | 5 | 7 | 9 |
| Размеры в транспортной упаковке | 390х240х280 | 420х390х280 | 600х390х280 |
| Внутренний диаметр посадочных колец | 11, 8, 5 см | 11, 8, 5 см | 11, 8, 5 см |
| Цена, руб.* | 9 000,00 | 11 500,00 | 14 500,00 |
* Цена товара указана по состоянию на декабрь 2019 года.
Водяные бани Stegler ТБ-4А и ТБ-6А
Бани предназначены для нагрева и поддержания температуры в диапазоне от комнатной +5 °С до 100 °С. Теплоноситель, как и у других моделей Stegler — дистиллированная вода. Для удобства работы бани снабжены сливным краном.
Баня состоит из блока терморегулирования, ванны, крышки с набором концентрических колец, нагревательного элемента, защитной решетки и датчика температуры жидкости.
Внешний корпус изготовлен из листовой стали холодного проката и покрыт специальной порошковой краской по высокотемпературной технологии. Бани выпускаются в белом и синем цвете. Емкость (ванна), в которой происходит нагрев, изготовлена из нержавеющей стали методом штамповки. Материал бани позволяет обеспечить высокую химическую стойкость и долговечность работы.
Бани снабжены микропроцессорным контроллером с функцией синхронизации и цифровым LCD-дисплеем. Реализована возможность установки таймера в диапазоне 1-999 мин.
Крышка бани снабжена системой из 4-х концентрических колец, позволяющих размещать в ванне различные колбы объемом до 1 л, стаканы, чашки для выпаривания и другую лабораторную посуду. Кольца изготовлены из пластика.
Гальванизированная трубка нагревательного элемента расположена в нижней части ванны. Термоэлемент нагревается быстро, тем самым экономя потребление электроэнергии. Сливное отверстие находится на дне ванны, обеспечивая удобство обслуживания и быструю замену рабочей жидкости.
С правой стороны имеется сливной кран, к котором можно подсоединить сливную трубку.
Особенности:
Технические характеристики:
| Модель Stegler | ТБ-4А | ТБ-6А |
| Кол-во мест | 4 | 6 |
| Расположение колб | 2 ряда | 2 ряда |
| Объём, л | 18,2 | 27,6 |
| Внешние размеры, ДхШхВ, мм | 580х390х290 | 735х390х290 |
| Внутренние размеры, ДхШхВ, мм | 315х290х200 | 485х285х200 |
| Полезная глубина, мм | 120 | 120 |
| Внутренний диаметр посадочных колец, мм | 112, 92, 72, 52, 32 | 112, 92, 72, 52, 32 |
| Мощность, Вт | 1000 | 1500 |
| Вес | 12 | 14 |
| Цена, руб. | 22 500,00 | 25 500,00 |
Ознакомиться с подробными техническими характеристиками и порядком работы лабораторных водяных бань Stegler ТБ-4А и ТБ-6А можно в руководстве по эксплуатации:
Баня-шейкер водяная SteglerSB-22 для встряхивания проб в пробирках и колбах
Данная баня широко используется в лабораторных исследованиях по выращиванию бактерий, ферментации, гибридизации, химических и биохимических лабораториях, а также в лабораториях, которые предъявляют высокие требования к точности скорости и температуры встряхивания.
Stegler SB-22 представляет из себя малошумный возвратно-поступательный шейкер с различными держателями и водяной баней для термостатирования образцов и имеет ряд преимуществ при относительно невысокой цене. Баня снабжена большим дисплеем с удобным кнопочным управлением.
Особенности:
Технические характеристики Stegler SB-22.
| Частота колебаний, кол./ мин | 20…200 |
| Амплитуда, мм | 16 или 24 |
| Точность установки частоты колебаний, кол./мин | ±1 |
| Регулируемый диапазон температур, °C | окр.ср….99 (±0,1) |
| Таймер, мин | 0….9999 |
| Объём бани, л | 31 |
| Размер ванны (Д×Ш×Г), мм | 500×310×200 |
| Мощность, Вт | 1500 |
| Габаритные размеры (ШхГхВ), мм | 828×360×425 |
| Масса, кг | 20 |
| Питание, В/ Гц | 220/50 |
Ориентировочная стоимость модели SB-22 — 70 000 руб.
Баня водяная лабораторная Stegler SHHW21.600AII
Это серологическая баня предназначенная для термостатирования в лабораторных пробирках, колбах и стаканах. Применяется при биохимических и серологических исследованиях в ветеринарных лабораториях, медицинских и учебных заведениях, научно-исследовательских организациях.
Особенности:
Технические характеристики:
| Диапазон поддержания температуры | от +5 до 100 ºС |
| Точность поддержания температуры | ±1 |
| Дискретность установки температуры | 0,1 |
| Материал корпуса | сталь покрытая порошковой краской |
| Материал емкости ванны | нержавеющая сталь |
| Контроллер | Цифровой, PID |
| Размеры ванны, мм | 600×300×200 |
| Рабочее напряжение, В/Гц | 220-240/50-60 |
| Мощность, Вт | 2 000 |
| Габаритные размеры, мм | 790×350×340 |
| Вес, нетто, кг | 17,8 |
| Штатив для установки пробирок | |
| Диаметр пробирки 13 мм | 95 шт |
| Диаметр пробирок 16 мм | 95 шт |
| Крышка с кольцами для установки колб и стаканов | |
| Кол-во мест | 6 |
| Диаметры рабочих мест под колбы, мм: | 50, 80, 110 |
| Цена, руб. | 25300,00 |
Баня водяная-редуктазник Таглер (Tagler) БВР-18 (производство Россия)
Баня молочная редуктазная Таглер (Tagler) БВР-18 – это баня российского производства, которая нашла широкое применение на пищевых производствах, в сельском хозяйстве, ветеринарии, а так же других областях для определения содержания жира в молоке по Герберу (в соответствии с требованиями ГОСТ Р ИСО 2446-2011). Представленный редуктазник является удобным инструментом для проведения данного анализа.
Таглер (Tagler) БВР-18 бесшумная, имеет понятную индикацию, таймер, который позволяет быстро и без ошибок определить показатель содержания жира. Автоматически нагревается до 65 градусов Цельсия, имеет таймер выключения со звуковым сигналом.
Бесшовное исполнение ванны исключает протекание при длительном сроке эксплуатации. Имеет возможность одновременной загрузки до 18 бутирометров. Удобная панель управления показывает все установленные параметры работы (температуру и время).
Баня водяная редуктазник Таглер (Tagler) БВР-18 оснащена универсальным алюминиевым штативом, который позволяет использовать как бутирометры, так и пробирки.
Технические характеристики
| Диапазон рабочих температур | от комнатной до +96 ˚С |
| Установка температуры с шагом | 1 ˚С |
| Диапазон выдержек в минутах | 1-99 мин |
| Максимальное количество размещаемых проб в штативе: | |
| Пробирки, шт. | 10 |
| Бутирометры, шт. | 18 |
| Колбы диаметром не более 17 мм, шт. | 18 |
| Вместимость емкости для воды, л | 7 |
| Напряжение питания, В | 220 ±10% |
| Частота, Гц | 50 |
| Габаритные размеры (ДхШхВ) | 235х400х270 |
| Масса, кг | 8 |
Ориентировочна стоимость модели БВР-18 — 29074,00 руб.
Баня Таглер (Tagler) БВР-18 имеет компактный размер и не занимает много места, что является очень удобным для размещения в лаборатории.
Для сравнения можно рассмотреть похожие модели другого производителя — серию бань LabExpert.
Аттестация и поверка водяных бань
Лабораторные бани относятся к испытательному оборудования, они не подлежат поверке, т.к. не являются средством измерения. Для бани можно провести аттестацию согласно температуре указанной в нормативном документе на методику измерения. Аттестацию можно провести в местном ЦСМ, или ее может провести штатный метролог, создав комиссию в лаборатории.
При необходимости использования водяных бань Стеглер в медицинских учреждениях, следует иметь ввиду, что данные приборы не являются изделиями медицинского назначения и не имеют регистрационного удостоверения (РУ).
Где купить баню водяную лабораторную?
Рассмотренные выше водяные бани имеют относительно невысокую стоимость при неплохих технических характеристиках. Широкий модельный ряд позволяет подобрать модель под разные лабораторные задачи, в том числе для определения жира в молоке с использованием бутирометров.
Приобрести водяные бани Stegler и Tagler по заводской цене вы можете у нас, отправив свой запрос на электронную почту или оставив его в комментариях.
ВНИМАНИЕ: Соблюдать меры безопасности при работе с кипящей водяной баней.
1. Наливают в 4 пробирки по 0,5 мл раствора крахмала. Еще в 4 пробирки наливают по 0,5 мл разбавленной (1:10) слюны.
3. Через 10 мин содержимое каждой пары пробирок сливают вместе, тщательно перемешивают и оставляют стоять еще 10 мин в тех же условиях.
4. Из 3-й пробирки отбирают 3 капли жидкости и проделывают реакцию с каплей йода на стекле. Если появляется синее окрашивание, растворы оставляют стоять еще 10 мин, и после этого повторяют реакцию с йодом на стекле. Затем добавляют 2 капли раствора йода во все пробирки и наблюдают за появлением окрашивания.
ВЫВОД (записать полученный результат и дать ему клинико-диагностическую оценку):
Влияние активаторов и ингибиторов на активность амилазы.
2. В каждую пробирку добавляют по 20 капель разведенной слюны (1:10), пробирки перемешивают, добавляют по 5 капель раствора крахмала и оставляют стоять при комнатной температуре 5 мин.
3. Тем временем готовят 3 пробирки с водой (по 1 мл) подкрашенной каплей раствора йода, и добавляют в них по 3 капли содержимого опытных проб. Наблюдают окрашивание в зависимости от степени расщепления крахмала амилазой. В 1-ой пробирке появляется фиолетовая или красно- бурая окраска, во второй пробирке, где ионы хлора играют роль активатора, появляется желтая окраска, а в 3-ей пробирке, где ионы меди тормозят действие амилазы, окраска остается синей. Если описанная картина не наблюдается, то опыт повторяют через 10-15 минут.
ВЫВОД (записать полученный результат и дать ему клинико-диагностическую оценку):
Влияние pH на активность амилазы слюны.
Оптимум pH для действия амилазы слюны можно определить при взаимодействии ее с крахмалом при различных значениях pH среды. О степени расщепления крахмала можно судить по реакции крахмала с йодом в течение времени. При оптимальном значении pH расщепление крахмала произойдет полностью (окраска с йодом отсутствует). По мере удаления от точки pH в кислую или щелочную сторону произойдет лишь частичное расщепление крахмала до стадии декстринов (красно-бурая или фиолетовая окраска) или крахмал вообще расщепляться не будет (синяя окраска).
1. В 4 пронумерованные пробирки отмеривают отдельными пипетками по 2 мл фосфатного буфера с различным значением pH (2,0; 4;0, 6,8; 9,0).
2. В каждую пробирку добавляют по 1 мл раствора крахмала и по 0,5 мл разбавленной (1: 10) слюны, которые помещают в термостат на 10 мин при 38° С.
3. Из каждой пробирки каплю жидкости смешивают с каплей раствора йода на предметном стекле и сравнивают окрашивание в каждой пробирке. Повторяют эту пробу через 1-2 мин до тех пор, пока проба из 5 пробирки даст с йодом на стекле красно-бурое окрашивание. Через 1-2 мин после этого во все пробирки добавляют по 2-3 кап раствора йода (начинать с 1 пробирки). Содержимое пробирок хорошо взбалтывают. Сравнивают между собой окрашивание во всех пробирках и делают вывод о степени расщепления крахмала, а, следовательно, об активности фермента при этом значении pH среды.
ВЫВОД (записать полученный результат и дать ему клинико-диагностическую оценку):
ТЕМА: Ферменты 3. Номенклатура и классификация ферментов. Медицинская энзимология.
Цель занятия: Сформировать представления о принципах номенклатуры и классификации ферментов, основных аспектах и проблемах медицинской энзимологии. Научиться определять активность амилазы в моче.
Исходный уровень знаний и навыков:
Студент должен знать:
1. Строение клетки и основных органелл
2. Понятие о мутациях и механизмах мутагенеза Основные этапы биосинтеза белка
3. Принципы и методы измерения скорости химических реакций
Студент должен уметь:
1. Выполнять качественные реакции на активность ферментов биологических жидкостей.
Структура занятия:
1. Теоретическаячасть:
1.1. Локализация ферментов в клетке (клеточная мембрана, цитоплазма, митохондрии, ядро, лизосома, рибосомы). Маркерные ферменты. Органоспецифические ферменты. Выделение и очистка ферментов. Качественное обнаружение и количественное определение. Единицы измерения количества и активности ферментов. Номенклатура и классификация.
1.2. Изоферменты, их биологическая роль. Полиферментные комплексы. Понятие о метаболоне.
1.3. Изменение активности ферментов в онтогенезе.
1.4. Основные направления клинической энзимологии.
1.4.2. Энзимодиагностика, принципы и объекты энзимодиагностики (кровь, моча, слюна, ликвор, пот, и др.). Характеристика основных ферментов сыворотки крови (клеточные, секреторные и экскреторные). Типы изменения активности ферментов при патологии (гипо-, гипер- и дисферментемия). Задачи энзимодиагностики.
1.4.3. Энзимотерапия. Использование ферментов для заместительной терапии. Лечение хирургических, сердечно- сосудистых и онкологических заболеваний. Иммобилизованные ферменты. Липосомы и их применение.
1.4.4. Использование ферментов в лабораторной практике для определения концентрации субстратов и активности ферментов.
1.4.5. Использование ферментов в промышленности и производстве.
2. Практическая часть (выполнение лабораторной работы):
2.1. Количественное определение активности амилазы мочи по Вольгемуту.
3. Решение задач и проведение контроля конечного уровня
1. 1. Материал лекций
2. Березов Т. Т., Коровкин Б.Ф. Биологическая химия, М., Медицина, 1990, стр. 126-132, М., Медицина, 1998, стр. 157-168.
4. 4. Р. Марри и др. «Биохимия человека», М., Мир, 1.1993, том 1, стр. 63-75.
5. 5. Филиппович Ю. Б. «Основы биохимии» М., Высшая школа, 1993, стр. 105-144.
6. 6. Ташев Т (ред.). Врожденные и приобретенные энзимопатии. М., Медицина, 1980.
7. 7. Вилкинсон Д. Принципы и методы диагностической энзимологии. М., Медицина, 1981.
8. 8. Руководство по клинической лабораторной диагностике. Киев, Выща школа, 1990, стр. 167-186
9. 9. Зилва Ф., Пеннел Дж. Клиническая химия в диагностике и лечении. М., Медицина, 1986, стр.372-388.
ЗАДАЧИ
1. Изоферменты ЛДГ различаются по:
| а) электрофоретической подвижности | г) субстратной специфичности |
| б) Km для ПВК | |
| в) числу субъединиц | д) органной локализации |
2. Какие из свойств ферментов плазмы крови можно использовать с целью диагностики?
а) молекулярную массу и его электрофоретическую подвижность
б) значение Km для субстратов
в) чувствительность к действию активаторов и ингибиторов, а также к условиям среды.
г) энергию активации
3. О каких заболеваниях свидетельствует увеличение активности перечисленных ферментов в плазме крови?
| 1. АСТ | а) Костные заболевания |
| 2. АЛТ | б) Острый гепатит |
| 3. Щелочная фосфатаза | в) Холестаз |
| 4. Кислая фосфатаза | г) Аденома простаты |
| 5. 5-нуклеотидаза | д) Инфаркт миокарда |
4. Ингибиторами каких ферментов являются указанные соединения:
| 1. Диизопропилфторфосфат | а) ДНК-полимераза |
| 2. Парахлормеркурийбензоат | б) Ацетилхолинэстераза |
| 3. Малонат | в) Ферменты с каталитически активной SH-группой |
| 4. Фторурацил | г) цитохромоксидаза |
| 5. Цианид | д) сукцинат-ДГ |
5. В структуру каких ферментов входят соединения?
| 1. FAD + | а) пируваткарбоксилаза |
| 2. пиридоксальфосфат | б) ЛДГ |
| 3. ТПФ (кокарбоксилаза) | в) АСТ |
| 4. биотин | г) оксидаза аминокислот |
| 5. NAD + | д) ПВК декарбоксилаза |
Лаборатоpная работа № 1: Количественное определение активности амилазы мочи по Вольгемуту.
ПРИНЦИП МЕТОДА: Определение активности амилазы в биологических жидкостях (моча, ликвор, слюна, сыворотка крови) основано на определении минимальной активности (количества) фермента, катализирующего в стандартных условиях гидролиз добавленного крахмала. Амилазная активность мочи выражается количеством мл крахмала, которое расщепляется ферментом, содержащимся в 1 мл неразведенной мочи, при температуре 45ºC за 15 минут.
ХОД РАБОТЫ: Берут 10 пронумерованных пробирок и приливают в каждую по 1 мл физиологического раствора. Затем в 1-ю пробирку добавляют 1 мл исследуемой мочи. Содержимое этой пробирки перемешивают, несколько раз втягивая и выпуская жидкость из пипетки. Набирают в пипетку 1 мл смеси и переносят во 2-ю пробирку и процедуру повторяют вплоть до 10-й пробирки. Из 10 пробирки 1 мл смеси отбрасывают. При этом получается следующее разведение мочи (см. табл.).
В каждую пробирку добавляют по 1 мл физраствора и по 2 мл 0,1% раствора крахмала. После перемешивания содержимого, пробирки термостатируют 15 мин при температуре 45°С. После инкубации пробирки охлаждают водопроводной водой и ставят в штатив по порядку. Прибавляют в каждую пробирку по 1 капле раствора йода и перемешивают. Отмечают пробирку с наибольшим разведением мочи, при котором произошло полное расщепление крахмала с йодом. Полученные данные заносят в таблицу:
| № пробирки | ||||||||||
| Разведение | 1:2 | 1:4 | 1:8 | 1:16 | 1:32 | 1:64 | 1:128 | 1:256 | 1:512 | 1:1024 |
| Гидролиз крахмала |
Расчет: Предположим, что полный гидролиз крахмала произошел в первых 4-х пробирках. В четвертой пробирке (где разведение мочи 1:16), 1/16 мл мочи гидролизует 2 мл 0,1% крахмала, значит 1 мл неразведенной мочи расщепит 32 мл 0,1% крахмала. Следовательно, активность амилазы мочи равна 32 единицы. В норме активность амилазы мочи равна 16-64 единицы.
Определение активности амилазы мочи и сыворотки крови широко используется в клинической практике для диагностики заболеваний поджелудочной железы. При острых панкреатитах амилазная активность мочи и сыворотки крови увеличивается в десятки раз, особенно в первые сутки заболевания, а затем постепенно возвращается к норме. При почечной недостаточности амилаза в моче отсутствует. В детском возрасте увеличение активности амилазы наблюдается при эндемическом паротите, что указывает на одновременное поражение поджелудочной железы вирусом паротита.
ВЫВОД (записать полученный результат и дать ему клинико-диагностическую оценку):
ТЕМА: Биологическое окисление 1. Цикл Кребса.
Цель занятия: Сформулировать современные представления о путях и механизмах получения, депонирования и утилизации энергии в живых организмах.
Исходный уровень знаний и умений:
Студент должен знать:
1. Элементы химической термодинамики. Первый и второй законы термодинамики. Энергия Гиббса.
2. Суть и механизм окислительно-восстановительных реакций.
Студент должен уметь:
1. Выполнять качественные реакции на субстраты энергетического обмена.
Структура занятия:
1. Теоретическая часть:
1.1. История развития учения о биологическом окислении (БО). Взгляды А. Лавуазье, М.В. Ломоносова, Ф. Шейнбайна, А.Н. Баха, К. Энглера, В.И. Палладина, Г. Виланда.
1.4. Дальнейшее развитие учения о биологическом окислении. Современные представления о биологическом окислении. Принципы преобразования и передачи энергии в живых системах. Окислительно-восстановительные реакции, окислительно-восстановительный потенциал. Макроэргические соединения, строение АТФ, причины макроэргичности.
1.6. Строение и функции митохондрии. Сравнительная характеристика мембран митохондрий. Ферментный состав различных компартментов.
1.8. Витамины PP, B2. Строение и роль в энергетическом обмене.
2.1. Открытие субстратов ЦТК (лимонной и янтарной кислот).
2.2. Качественное обнаружение цитохромоксидазы.
3. Решение задач и проведение контроля конечного уровня
1. Материал лекций
2. Березов Т. Т., Коровкин Б.Ф. Биологическая химия, М., Медицина, 1990, стр. 213-220, М., Медицина, 1998, стр. 223-226, 345-353.
4. 4. Р. Марри и др. «Биохимия человека», М., Мир, 1993, том 1, стр. 111-126, 172-177.
5. 5. Ленинджер А. Основы биохимии, 1985, том 2, стр. 477-507.
ЗАДАЧИ:
1. БО у высших организмов сопряжено с:
| а) переносом протонов | г) переносом электронов |
| б) образованием воды | д) прямым потреблением кислорода |
| в) функцией митохондрий |
2. В митохондриях:
| а) образуются липопротеиды крови | г) синтезируются стероиды |
| б) протекает гидролиз макромолекул | д) гидролизуются лекарства |
| в) происходит окислительное фосфорилирование |
3. Какие из этапов ЦТК обеспечивает наибольший выход АТФ:
| а) изоцитрат ¾® малат | г) сукцинат¾® фумарат |
| б) изоцитрат ¾® a-КГ | д) сукцинат ¾® ЩУК |
| в) a-КГ ¾® ЩУК |
4. При окислении 1 г жира образуется больше энергии, чем при распаде углеводов и белков, потому что:
а) липиды образуют большее количество ацетил-КоА, чем необходимо для ЦТК
б) ткани, утилизирующие липиды выделяют больше тепла, чем ткани, утилизирующие углеводы.
в) атомы углерода в липидах «более восстановлены», чем в белках и углеводах.
г) окислительный метаболизм липидов протекает более полно
д) молекулярный вес липидов больше, чем углеводов.
5. Какой из следующих биологических процессов потребляет наибольшее количество энергии?
| а) анаэробный гликолиз | г) биосинтез белка |
| б) фиксация углекислого газа | д) аэробное (окислительное) фосфорилирование |
| в) протеолиз | е) биосинтез липидов |
6. Какие из указанных соединений являются макроэргическими:
| а) фосфокреатин | г) АДФ |
| б) фосфоенолпируват | д) АТФ |
| в) АМФ | е) аденозин |
Лаборатоpная работа № 1. Открытие некоторых субстратов ЦТК (лимонной и янтаpной кислот)
ПРИНЦИП МЕТОДА: Ди- и трикарбоновые кислоты, карбоксильные группы которых расположены рядом при взаимодействии с резорцином и конц. серной кислотой образуют флюоресцирующие в ультрафиолетовом свете продукты.